ПОРІВНЯННЯ АДГЕЗИВНИХ ВЛАСТИВОСТЕЙ ШТАМІВ STAPHYLOCOCCUS AUREUS ТА ESCHERICHIA COLI, ВИДІЛЕНИХ ІЗ ПІХВИ МИШЕЙ У НОРМІ Й У РАЗІ ДИСБІОЗУ

Автор(и)

  • Єлизавета ВОРОБЄЙ Дніпровський національний університет імені Олеся Гончара
  • Ольга ВОРОНКОВА Дніпровський національний університет імені Олеся Гончара
  • Альберт ВІННІКОВ Дніпровський національний університет імені Олеся Гончара

DOI:

https://doi.org/10.32782/1998-6475.2025.58.2

Ключові слова:

стафілококи, кишкова паличка, адгезія, плівкоутворення, мікробні біоплівки

Анотація

У роботі досліджено 34 штами Staphylococcus aureus і 24 штами Escherichia coli, виділені з репродуктивного тракту здорових мишей і мишей з дисбіозом піхви. Від тварин без ознак патології виділено 9 штамів S. aureus та 1 штам, ідентифікований як E. coli. Від тварин із дисбіозом піхви, індукованим інтравагінальним уведенням плівкоутворювального штаму S. aureus, – 14 штамів S. aureus і 12 штамів E. coli. Від тварин із дисбіозом піхви, індукованим інтравагінальним уведенням неплівкоутворювального штаму S. aureus, – 11 штамів S. aureus та 11 штамів E. Coli, що свідчить про більш видове різноманіття умовно-патогенних мікроорганізмів за умов дисбіозу. Збільшення кількості представників 1 штаму S. aureus у результаті індукції дисбіозу зумовлювало полегшення колонізації біотопу іншими штамами цього виду й навіть іншими видами бактерій, зокрема E. coli.Визначено, що більш виражені адгезивні властивості мали штами, виділені при дисбіозі, викликаному інтравагінальним уведенням плівкоутворювального штаму S. aureus. Так, серед стафілококів переважали штами із середніми показниками адгезивності (50,0 %), 35,7 % штамів були високоадгезивними, 14,3 % – низькоадгезивними. Середній показник адгезії (СПА) коливався в межах від 1,36 ± 0,48 до 4,00 ± 0,78.Коефіцієнт участі еритроцитів (КУЕ) становив 79,64 ± 2,65 %, а індекс адгезивності мікроорганізмів (ІАМ) варіював від 1,81 до 5,19. Серед штамів кишкової палички високоадгезивними були 75,0 %, середньоадгезивними – 25,5 %. СПА коливався від 3,02 ± 0,74 до 4,96 ± 0,78. КУЕ становив 84,00 ± 2,95 %, а ІАМ коливався у межах від 3,55 до 6,12. Це свідчить про їх вищий потенціал патогенності за рахунок збільшення колонізаційної здатності поверхонь слизових оболонок піхви.

Посилання

ALABBOSH, K. F., TAREK ZMANTAR, T., BAZAID, A. S., SNOUSSI, M., NOUMI, E. (2023) Antibiotics Resistance and Adhesive Properties of Clinical Staphylococcus aureus Isolated from Wound Infections. Microorganisms, 11(5), 1–10. DOI: 10.3390/ microorganisms11051353.

BATTAGLIA, M., GARRETT-SINHA, L. A. (2023) Staphy lococcus xylosus and Staphylococcus aureus as commensals and pathogens on murine skin. Laboratory Animal Research, 18, 1–13. DOI: 10.1186/ s42826-023-00169-0.

Bergey’s Manual of Systematics of Archaea and Bacteria (BMSAB) (2015) (Ed. Whitman, W. B.). Wiley, Hoboken, New Jersey, eBook. DOI: 10.1002/9781118960608.

BRYLYS, V. Y., BRYLENE, T. A., LENTSNER, K. P., LENTSNER, A. A. (1986) Metodika izucheniia adhezivnoho protsessa mikroorhanizmov [Methodology for studying the adhesive process of microorganisms]. Laboratory work, 4, 210–212 (in Russian).

DA SILVA, J. C., BOECHAT, J. P. C., SILVA, B. D. J., RODRIGO MULLER, R., SENNA, J. P. M. (2024) Monitoring Staphylococcus aureus nasal colonization murine model using a bioluminescent methicillin- resistant S. aureus (MRSA). Laboratory Animals, 58(3), 231–239. DOI: 10.1177/00236772231209790

FAUSTOVA, M. O. (2021) Vzaiemozviazok adhezyvnykh ta plivkoutvoriuiuchykh vlastyvostei STAPHYLOCOCCUS SPP. – zbudnykiv infektsiino- zapalnykh zakhvoriuvan miakykh tkanyn shchelepno- lytsevoi dilianky [Relationship between adhesive and film-forming properties of STAPHYLOCOCCUS SPP. – pathogens of infectious inflammatory diseases of soft tissues of jaw and facial area]. Bulletin of the Ukrainian Medical Stomatological Academy, 21(2), 165–168. DOI: 10.31718/2077-1096.21.2.165 (in Ukrainian).

JIANG, Z., NERO, T., MUKHERJEE, S., OLSON, R., YAN, J. (2021) Searching for the Secret of Stickiness: How Biofilms Adhere to Surfaces. Frontiers in Microbiology, 12, 1–19. DOI: 10.3389/fmicb.2021.686793

MAHON, C. R., LEHMAN, D. C. (2023) Textbook of diagnostic microbiology. Elsevier.

MOZHAIEV, I. V., YEVSIUKOVA, V. IU.,TO RIA- NYK, I. I., MINUKHIN, V. V., POLISHCHUK, N. M., KYRYK, D. L. (2023) Vplyv ekstraktu horikha voloskoho vuhlekyslotnoho na adhezyvnu aktyvnist zbudnykiv ranovoi infektsii [Effect of walnut extract supplemented with carbon dioxide on adhesive activity of agents causing wound infection]. Zaporozhye medical journal, 25(2), 158–163. doi: 10.14739/2310-1210.2023.2.263966 (in Ukrainian).

MYRONCHUK, V. O., PELENO, R. A. (2024) Analiz adhezyvnykh ta bioplivkoutvoriuiuchykh vlastyvostei polovykh izoliativ mikroorhanizmiv prymishchen dlia utrymannia svynei za dii dezzasobiv “Sviteco PIP Multi” i “Vulkan Maks” [Analysis of adhesive and biofilm- forming properties of field isolates of microor-ganisms for pig houses under the action of disinfectants “Sviteco PIP Multi” and “Vulkan Max”]. Scientific Messenger of LNU of Veterinary Medicine and Biotechnologies. Series: Veterinary Sciences, 26(116), 212–219. DOI: 10.32718/nvlvet11631(in Ukrainian).

NAPPI, F., AVTAAR SINGH, S. S. (2023) Host-Bacterium Interaction Mechanisms in Staphylococcus aureus Endocarditis: A Systematic Review. International Journal of Molecular Sciences, 24(13), 1–34. DOI: 10.3390/ijms241311068

NING, Z., XUE, B., WANG, H. (2021) Evaluation of the Adhesive Potential of Bacteria Isolated from Meat- Related Sources. Applied Sciences, 11(22), 1–9. DOI: 10.3390/app112210652

SHARMA, S., MOHLER, J., MAHAJAN, S. D., SCHWARTZ, S. A., BRUGGEMANN, L., AALINKEEL, R. (2023) Microbial Biofilm: A Review on Formation, Infection, Antibiotic Resistance, Control Measures, and Innovative Treatment. Microorganisms, 11(6), 1–32. DOI: 10.3390/microorganisms11061614

SONG, L., SCHWINN, L.-S., JULIANE BARTHEL, J., KETTER, V., LECHLER, P., LINNE, U., RASTAN, A. J., VOGT, S., RUCHHOLTZ, S., PALETTA, J. R. J., GÜNTHER, M. (2025) Implant-Derived S. aureus Isolates Drive Strain-Specific Invasion Dynamics and Bioenergetic Alterations in Osteoblasts. Antibiotics, 14(2), 119, 1–25. DOI: 10.3390/antibiotics14020119

YU, J., HAN, W., XU, Y., SHEN, L., ZHAO, H., ZHANG, J., XIAO, Y., GUO, Y., YU, F. (2024) Biofilm-producing ability of methicillin-resistant Staphylococcus aureus clinically isolated in China. BMC Microbiology, 241, 1–9. DOI: 10.1186/s12866-024-03380-8

ZHAO, A., SUN, J., LIU, Y. (2023) Understanding bacterial biofilms: From definition to treatment strategies. Frontiers in Cellular and Infection Microbiology, 13, 1–23. DOI: 10.3389/fcimb.2023.1137947

##submission.downloads##

Опубліковано

2025-05-30