Антибіотикорезистентність у мікробних біоплівках: порівняльний аналіз антибіотикорезистентності біоплівкотвірних та планктонних форм бактерій роду Staphylococcus
DOI:
https://doi.org/10.32782/2786-7676/2023.1.06Ключові слова:
антибіотикорезистентність, бактеріальна біоплівка, умовно-патогенні бактерії.Анотація
Одним із факторів, що потенціює формування антибіотикорезистентності, є формування бактеріями біоплівки. У ході нашого дослідження від 185 хворих в умовах хронічного тонзиліту ізольовано 210 клінічних ізолятів мікроорганізмів. Домінуючими представниками, які ізолювали в 52,5% випадків, були бактерії родини Staphylococcaceae та Streptococcaceae (S. pyogenes), які виявляли у 37% випадків. Серед стафілококів переважав S. aureus (35,7%) рідше виділяли S. epidermidis (12%) та S. haemolyticus (4,8%). Дослідження ізолятів, виділених у разі хронічного тонзиліту, показало, що до утворення біоплівки були здатні 69 штамів бактерій роду Staphylococcus, серед них 50 – S. aureus, 3 – S. haemolyticus та 16 штамів S. epidermidis. Тобто біоплівкотвірними були 69 (62%) із 111 досліджених. Встановлено, що більшість стафілококів, які утворювали біоплівку, проявляли підвищений рівень резистентності до антибіотиків та входили до складу асоціацій. Найвищий рівень резистентності серед біоплівковтірних ізолятів S. aureus виявили до антибіотиків ампіцилін, тетрациклін, доксициклін, кларитроміцин, канаміцин, азитроміцин. Серед біоплівкотвірних ізолятів S. aureus встановлено значно вищий рівень резистентності до цефуроксиму, азитроміцину, антибіотиків тетрациклінового ряду, ніж серед планктонних штамів. До фторхінолонів, стійких планктонних ізолятів золотистого стафілококу виявлено не було. Серед епідермальних стафілококів виявлена аналогічна тенденція вищого рівня резистентності серед біоплівкотвірних ізолятів. Таку закономірність встановлено до ампіциліну, цефалексіну, макролідів, канаміцину та лінкоміцину. До фторхінолонів усі планктонні ізоляти епідермального стафілококу були чутливими, серед біоплівкотвірних – виявляли стійкі до ломефлоксацину. Аналіз чутливості мікроорганізмів до антибіотиків є важливим складником моніторингових досліджень циркуляції антибіотикорезистентних ізолятів. Водночас важливим є встановлення локальних та регіональних особливостей циркуляції антибіотикостійких штамів.
Посилання
Urban-Chmiel R., Marek A., Stępień-Pyśniak D., Wieczorek K., Dec M., Nowaczek A., Osek J. Antibiotic Resistance in Bacteria – A Review. Antibiotics. 2022. 11(8). 1079.
Global Action Plan on Antimicrobial Resistance. Microbe Magazine. 2015. 10 (9). 354–355.
Hall-Stoodley L., Costerton J.W., Stoodley P. Bacterial biofilms: from the natural environment to infectious diseases. Nat. Rev. Microbiol. 2004. 2. 95–108.
Appelbaum PC. Bacterial Resistence in the New Millennium: Its impact on antibiotic selection for respiratory tract infections. Postgraduate medicine. 2000. 108 (7 Suppl Contemporaty). 5–16.
Assaf A.M., Amro B.I., Mashallah S., Haddadin R.N. Antimicrobial and anti-inflammatory potential therapy for opportunistic microorganisms. The Journal of infection in developing countries. 2016. 10(05). 494.
Jenkinson H.F., Lamont R.J. Oral microbial communities in sickness and in health. Trends Microbiol. 2005. 13. 589–595.
Vos P., Garrity G., Jones D., Krieg N.R., Ludwig W., Rainey F.A., Whitman W. Bergeyʼs Manual of Systematic Bacteriology. Springer Science & Business Media. 2011. (3).
O’Toole G. Kaplan H.B., Kolter R. Biofilm Formation as Microbial Development. Annual Review of Microbiology. Annual Reviews. 2000. 54(1). 49–79.
Otto M. Staphylococcal biofilms. Bacterial biofilms. 2008. 207–228.
Vuong C., Saenz H.L., Gotz F., Otto M. Impact of agr quorumsensing system on adherence to polystyrene in Staphylococcus aureus. J. Infect. Dis. 2000. 182. 1688–1693.
Yazdani R., Oshaghi M., Havayi A. Detection of icaAD gene and biofilm formation in Staphylococcus aureus isolates from wound infections. Iran J Public Health. 2006. 35(2). 25–28.
Zhang Yu-Zhi, Singh S. Antibiotic stewardship programmes in intensive care units: Why, how, and where are they leading us. World J. Crit. Care Med. 2015. 4(1). 13–28.
Kryvtsova M.V., Király J., Koščová J., Kostenko Y.Y., Bubnov R.V., Spivak M.Ya. Determination of biofilm formation and associated gene detection in Staphylococcus genus isolated from the oral cavity under inflammatory periodontal disease. Biol. Stud. 2020. 14(3). 49–64. 14. Kryvtsova M.V., Kostenko Y.Y. Dominant microbial associations of oral cavity periodontitis and features of their sensitivity to antibacterial drugs. Studia Biologica. Ivan Franko National University of Lviv. 2020. 14(1). 51–62.