ОСОБЛИВОСТІ ВВЕДЕННЯ В КУЛЬТУРУ IN VITRO РІДКІСНИХ ТАКСОНІВ ГВОЗДИК УГОРЩИНИ

Автор(и)

  • Золтан ЧЕГ
  • Юдіт ДОБРАНСЬКІ
  • Іветт НОВАК-ГЕРМАН
  • Пал СОРВОШ
  • Дора ФОРКОШ
  • Юдіт ЧОБОЇ
  • Анжела КОЛЕСНИК

DOI:

https://doi.org/10.32782/1998-6475.2023.54.128-134

Ключові слова:

Dianthus, in vitro, мікроклональне розмноження, стерилізація, постасептична адаптація

Анотація

Культивування рослин in vitro на сьогодні є одним із поширених методів вегетативного розмноження рослин. Це дає змогу в короткі строки на невеликих площах і відносно недорого отримувати у великих кількостях однорідний посадковий матеріал, зберігати особливо цінні фено- й генотипи чи отримувати біологічно активні речовини рослинного походження. Використання методу мікроклонального розмноження рослин є чудовим доповненням для збереження критичних видів, які перебувають під загрозою зникнення в природних локалітетах або ж мають ускладнене генеративне відтворення. Головною метою наших досліджень було з’ясувати особливості введення в культуру тканин трьох рідкісних і зникаючих видів флори Угорщини, а саме Dianthus plumarius ssp. praecox (Willd. ex Spreng.) Domin, Dianthus giganteiformis Borbás ssp. pontederae (Borbás) Soó та Dianthus superbus L. Як вихідні експланти використовували здорове й життєздатне насіння. Стерилізаційними реагентами були різні концентрації хлориду ртуті (HgCl2), гіпохлориду натрію (NaClO) та господарського хлораміну В (NH2Cl). Надалі рослини вирощували на агаризованому безгормональному середовищі Мурасіге і Скуга. Встановлено, що для насіння трьох досліджених таксонів гвоздик найбільш оптимальною є стерилізація 2,5%-м хлораміном В протягом 15 хв, це забезпечує отримання асептичного посадкового матеріалу, здатного інтенсивно проростати й утворювати життєздатні експланти. Для індукції ризогенезу найбільш оптимальним є модифіковане середовище МС з додаванням індолілоцтової кислоти в концентрації 0,1 мг/л, вирощені за таких умов рослини легко і з високою імовірністю акліматизовуються до асептичних умов зростання.

Посилання

BAE, K.H., YOON, E.S. (2015) Seed germination and in vitro plant regeneration through callus culture of two Lichnis species. Plant Tissue Culture and Biotechnology, 25 (1), 1–12.

BARTHA, D. (2012) Természetvédelmi növénytan. Mezőgazda kiadó. Budapest.

CHIORCHINA, N., GHEREG, M., TABARA, G.M., KUTKVSKI-MUSHTUK, A. (2021) Micropropagation and maintenance of rare plants tough in vitro culture. Proceedings of the XI International Congress of Geneticists and Breeders of the Republic Moldova, June 15–16, 2021, Chisinau, Moldova, pp. 151.

CRIȘAN, L.R., PETRUȘ-VANCEA, A. (2016) Paulownia tomentosa L. in vitro propagation. Natural Resources and Sustainable Development, 6, 30–37.

DEBNATH, M., MALIK, C., BISEN, P. (2006) Micropropagation: A Tool for the Production of High Quality Plant-based Medicines. Current Pharmaceutical Biotechnology, 7(1), 33–49. DOI:10.2174/138920106775789638

DUDITS, D., HENSZKY, L. (2003) Növényi biotechnológia és géntechnológia. Agroinform Kiadó.

ENGELMANN, F. (1997) In vitro conservation methods. In: Callow, J.A., Ford-Lloyd, B.V., Newbury, H.J. (Eds), Biotechnology and Plant Genetic Resources: Conservation and Use, CABI Publishing, Wallingford, UK, pp. 119–161.

FARKAS, S. (1999) Magyarország védett növényei. Mezőgazda kiadó, Budapest.

FAY, M.F. (1992) Conservation of rare and endangered plants using in vitro methods. In Vitro Cellular & Developmental Biology-Plant, 28, 1–4.

HIDEG, É. MIHÓK, B., GÁSPÁR, J., SCHMIDT, P., MÁRTON, A., FABÓK, V., BÁLDI, A. (2019) Környezeti jövőkutatás – Magyarország 2050. Ökológiai Kutatóközpont tanulmányai, Budapest.

JÁMBORNÉ BENCZÚR, E., DOBRÁNSZKI, J. (2005) Kertészeti növények mikroszaporítása. Mezőgazda Kiadó. Budapest.

MURASHIGE, T., SKOOG, F. (1962) A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue cultures. Plant Physiology, 15, 473–497.

POP, T.I., PAMFIL, D. (2011) In vitro Preservation of three Species of Dinathus from Romania. Bullentin UASVM Horticulture, 68 (1), 414–422.

PUNESCU, A. (2009) Biotechnology for endangered plant conversion: a critical overview. Romanian biotechnological letters, 14(1), 4095–4103.

RANDS MR, ADAMS WM, BENNUN L, BUTCHART SH, CLEMENTS A, COOMES D, ENTWISTLE A, HODGE I, KAPOS V, SCHARLEMANN JP, SUTHERLAND WJ, VIRA B. (2010) Biodiversity conservation: challenges beyond 2010. Science, 329(5997), 1298–1303.

RAZDAN, M.K. (2003) Introduction to Plant Tissue Culture. Intercept.

REED, B.M., SARASAN, V., KANE, M., BUNN, E., PENCE, V.C. (2011) Biodiversity conservation and conservation biotechnology tools. In Vitro Cellular & Developmental Biology-Plant, 47, 1–4.

SARASAN, V., CRIPPS, R., RAMSAY, M.M, ATHERTON, C., McMICHEN, M., PRENDERGRAST, G., ROWNTREE, J.K. (2006) Conservation in vitro of threatened plants – progress in the pastdecade. In Vitro Cellular & Developmental Biology-Plant, 42, 206–214.

##submission.downloads##

Опубліковано

2023-12-14